bowtie2

一、转录组还是基因组?

map常用的工具有bowtie/bowtie2, BWA,SOAP1/SOAP2等。这个问题又会被分成两个问题,是基因组测序(DNA-seq)还是转录组测序(mRNA-seq)。其中的区别是对于真核生物而言,mRNA序列与DNA序列并不完全相同,在经历了后剪切之后,成熟的mRNA可能是原基因的一部分,甚至顺序及个别碱基会产生变化。如果是mRNA测序,那map工作就会在DNA测序map的基础上再多一步,map到转录组上去。所以最为流行的做法是,使用bowtie来map DNA测序,使用tophat来map RNA测序。实际上,tophat是通过调用bowtie来完成工作的。而tophat1和tophat2的差别最主要的就是调用了bowtie1还是bowtie2。当然如果你只安装了bowtie1的话,tophat2也可以调用它

二、bowtie有1和2的差别:

1,bowtie1出现的早,所以对于测序长度在50bp以下的序列效果不错,而bowtie2主要针对的是长度在50bp以上的测序的。
2,Bowtie 2支持有空位的比对
3,Bowtie 2支持局部比对,也可以全局比对
4,Bowtie 2对最长序列没有要求,但是Bowtie 1最长不能超过1000bp。
5. Bowtie 2 allows alignments to [overlap ambiguous characters] (e.g. Ns) in the reference. Bowtie 1 does not.
6,Bowtie 2不能比对colorspace reads.
…………

三、选不选bowtie:

Bowtie 2 在比对大的基因组的时候,工作效果更好一些,如果你是比对两个特别大的基因组,可以考虑MUMmer,如果你比对的是两个特别相近且比较小的基因组,可以用[NUCmer], [BLAT], or [BLAST]. 但是Bowtie 2不能比对colorspace reads.

四、Bowtie的简介:

Bowtie是一个超级快速的,较为节省内存的短序列拼接至模板基因组的工具。它在拼接35碱基长度的序列时,可以达到每小时2.5亿次的拼接速度。
Bowtie并不是一个简单的拼接工具,它不同于Blast等。它适合的工作是将小序列比对至大基因组上去。它最长能读取1024个碱基的片段。模板最小尺寸不能小于1024碱基,而短序列最长而不能超过1024碱基。换言之,bowtie非常适合下一代测序技术。
在 使用bowtie前,需要使用bowtie-build来构建比对模板。

Bowtie设计思路是:1)短序列在基因组上至少有一处最适匹配, 2)大部分的短序列的质量是比较高,3)短序列在基因组上最适匹配的位置最好只有一处。这些标准基本上和RNA-seq, ChIP-seq以及其它一些正在兴起的测序技术或者再测序技术的要求一致。

五、Bowtie 2对example文件夹中Lambda的处理

1,对lambda_virus.fa建立索引值

2.1 针对unpaired reads的比对

/sam/bowtie2/bowtie2 -p cpu -x lambda_virus -U /sam/bowtie2/example/reads/reads_1.fq -S eg1.sam

2.2针对Paired-end reads的比对

问题:

这里的reads用的是clean reads,还是raw reads,我觉得应该是clean reads,如果是clean reads 的话,就得先对raw reads进行trim,但是trimmomatic进行trim后生成的可是4个文件(因为Illumina测序出来paired end 就有正反两个raw reads,trim后就包括了能配对的两个正反reads,和不能配对的两个正反reads),这样的话,我用哪个呢,就用仅仅能配对上的两个clean reads?,如果这样的话,我的拼接过程中可是都用了的,要不分开去匹配,但是分开匹配的,最后的结果又怎么统计呢?
先用bowtie处理paired的,然后再用-u处理unpaired 得到两个sam,再cat ,然后再用samtools sort后来统计结果。
我误以为这个bowtie既可以处理pair的,也可以同时处理unpair的,结果出现上面的问题。实际上应该是bowtie2处理的 paired reads 在的两个文件,必须有同样多的 reads数,并且都是一一对应的;如果一对不能都比上 会找其中一条来比对上;一个如果不能比对到基因组,那么使用 –no-mixed 参数,则不会对与之匹配的reads进行比对了。总之核心思想就是必须处理一对,如果一对中有一条未能匹配上,你可以选择是否保留这一对的结果,–no-mixed就是你的选择。

2.3局部比对的例子

问题:这里的的local跟之前的有啥区别呢?
可以加入-p 12来调动我的12个cpu,速度会更快
查看生成的eg1.sam文件
head eg1.sam

2.4其他参数的说明:

Bowtie提供了两个参数(–phred33和–phred64)来指定计分系统,默认是前者。而且,bowtie会根据输入的具体数据来识别输入数据实际采用哪套计分系统,用户不必指定。
针对Phred+33计分系统
!-% 33-37 罚分为0。
&-/ 38-47 罚分为10。
0-9 48-57 罚分为20。
:-I-~ 58-73-126罚分为30。Phred+33实际分数最高到73
针对Phred+64计分系统
!-% 64-68 罚分为0。
&-/ 69-78 罚分为10。
0-9 79-88 罚分为20。
:-I-~ 89-104-126罚分为30。Phred+64实际分数最高到104

比对的结果参数:

-N 在种子比对的过程中容许的错配数,一般可以设置为0或者1,设的越高,越慢,但是可以增加比对的灵敏性,默认的为0
-L 设置的种子字串的长度,越小,越灵敏,但是越慢,默认的参数设置参考上面的。
-i 怎么设置种子,详见官网说明书
……
其他的参数具体看官网说明书

六、使用SAMtools/BCFtools来接下来分析

SAMtoolsis是分析SAM和BAM文件的工具
BCFtools分析突变和操作VCF和BCF文件的工具
例子:
1,先用bowtie2生成sam文件
$BT2_HOME/bowtie2 -x $BT2_HOME/example/index/lambda_virus -1 $BT2_HOME/example/reads/reads_1.fq -2 $BT2_HOME/example/reads/reads_2.fq -S eg2.sam
-x 表示建立的索引的前缀名字 -1 -2 后面分别的是双末端测序的reads –S为输出的结果
2,samtools 将SAM文件转化为BAM文件
samtools view -bS eg2.sam > eg2.bam
3,用samtools sort将BAM文件进行排序。
samtools sort eg2.bam eg2.sorted
4,寻找突变通过VCF格式
samtools mpileup -uf $BT2_HOME/example/reference/lambda_virus.fa eg2.sorted.bam | bcftools view -bvcg – > eg2.raw.bcf
5,看突变位点
bcftools view eg2.raw.bcf

七、讨论

如何让bowtie快起来:
如果bowtie在你的机器上运行起来很慢,那么你可以试试以下的一些办法来让它跑得快一些:
1,尽可能的使用64位bowtie。很显然,64位运算会比32位运算更快。所以最好使用支持64位运算的计算机来运行64位的bowtie。如果你是从原文件开始编译程序,在g++编译时,你需要传递-m64参数,你也可以在make的时候加入这一信息,比如说传递BITS=64给make,具体的:make BITS=64 bowtie。想知道你自己运算的是什么版本的bowtie,你可以运行bowtie –version
2,如果你的计算机有多个CPU或者CPU内核,那么请使用-p参数。-p参数会让bowtie进入多线程模式。每一个线程都会使用单独的CPU或者CPU内核。这种并行的运算模式也会大大加快运算速度。
3,如果你的报告文件中每条短序列都有太多的匹配位点(超过10)那么你可以试着重新使用bowtie-build加上 –offrate参数,如bowtie-build –offrate 4。-o/–offrate默认值为5,每下降1,比对速度会增加1倍,但是系统消耗(硬盘空间和内存)也会加倍。如果你的系统 配置太低,比如内存不足4GB,那么建议你在bowtie的时候使用–offrate参数。与上一条相反的,你需要加大offrate的值。bowtie –offrate 6. 其默认值为5。每增加1,内存空间的要求下降,这样会减少读取硬盘当�%AL��拟内存的次数,速度反而会有所上升。
4,-n模式与-v模式。
默认的,bowtie采用了和Maq一样的质量控制策略,设置-n 2 -l 28 -e 70。总的来说,比对模式分为两种,一种是 -n 模式, 一种是 -v 模式,而且这两种模式是不能同时使用的。bowtie默认使用-n模式。
-n模式参数: -n N -l L -e E
其中N,L,E都为整数。-n N 代表在高保真区内错配不能超过N个,可以是0?3,一般的设置为2。-l L代表序列高保真区的长度,最短不能少于5,对于短序列长度为32的,设置为28就很不错。-e E代表在错配位点Phred quality值不能超过E,默认值为40。Phred quality值的计算式为:-10 log(P,base(10))
Phred Quality值 错配可能性 正配可能性
10 1/10 90%
20 1/100 99%
30 1/1000 99.9%
40 1/10000 99.99%
50 1/100000 99.999%
而-v模式的参数相对较少。
-v模式参数:-v V
其中V为整数。-v V代表全长错配不能超过V个,可以是0?3。这时,不考虑是否高保真区,也不考虑Phred quality值。
5,–best 与–strata
–best 参数代表报告文件中,每个短序列的匹配结果将按匹配质量由高到低排序。–strata参数必须与–best参数一起使用,其作用是只报告质量最高的那部 分。所谓质量高低,其实就是指错配的碱基数,如果指定了-l L参数,那就是在高保真区内的错配数,否则就是全序列的错配数。如果你还指定了 -M X的话,那就会在质量最高的当中,随机选择X个来报告。也就是说,当我们指定了-M 1 –best –strata的话,那就只报告1个最好的。
对于输入,-q是指输入的文件为FASTQ(文件扩展名通常为.fq或者.fastq)格式;-f是指输入文件为FASTA(文件扩展名通常为.fa, .mfa或者.fna)格式;-c是指在命令行直接输入要比对的序列。

参考资料:
官方使用说明手册 http://computing.bio.cam.ac.uk/local/doc/bowtie2.html
bowtie:短序列比对的新工具http://blog.sina.com.cn/s/blog_5ecfd9d90100ukqq.html
Lemon的博客:http://blog.163.com/zhoulili1987619@126/blog/static/3530820120137132216950/

附:
[Bowtie 2] is often the first step in pipelines for comparative genomics,including for variation calling, ChIP-seq, RNA-seq, BS-seq. [Bowtie 2] and [Bowtie] (also called “[Bowtie 1]” here) are also tightly integrated into some
tools, including [TopHat]: a fast splice junction mapper for RNA-seq reads,[Cufflinks]: a tool for transcriptome assembly and isoform quantitiation from RNA-seq reads, [Crossbow]: a cloud-enabled software tool for analyzing

reseuqncing data, and [Myrna]: a cloud-enabled software tool for aligning RNA-seq reads and measuring differential gene expression.

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